Лариса Сергеевна Бочарова.
Воспоминания (2003 г.)

ЭЛЕКТРИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ, КАЛЬЦИЙ И РНК: ВЗГЛЯД ЧЕРЕЗ 30 ЛЕТ
Борис Николаевич увлекался и занимался очень разными проблемами, часто далекими друг от друга. Но вопрос о роли электрической активности нервной клетки в регуляции синтеза РНК занимает особое место в его научной биографии. Это тема его докторской диссертации, защищенной в 1971 году, и последней публикации, обзора 1989 года, написанного вместе с Н.К. Чемерисом. Можно сказать, что прежде всего работы этого направления создали Б.Н. Вепринцеву имя в клеточной биофизике. Предпосылки, с которых начинались эти работы, основные результаты и выводы, сделанные в то время, интересны не только сами по себе. Я попытаюсь, сопоставив их с современными представлениями о механизмах сопряжения мембранных и синтетических процессов, проследить, насколько изменились подходы в изучении интегративной деятельности клетки.


ПРЕДПОСЫЛКИ
Статья Б.Н. Вепринцева и Т.Л. Дьяконовой «Регуляция электрической активностью синтеза РНК в нервной клетке» вышла в журнале "Биофизика" в 1965 году. Она была первой в серии его работ этого направления. Статья была замечена, переведена на английский, цитировалась. Это был очевидный прорыв в понимании взаимосвязи функциональной активности и синтетических процессов в нервной клетке. Сама проблема в это время была одной из горячих точек на стыке нейрофизиологии, биохимии и цитологии. Понимание того, что электрическая активность как-то влияет на обмен РНК и белков, уже было. Уже была разработана, прежде всего благодаря работам Касперсона, методология количественных цитохимических исследований. Появились сначала самодельные, а вскоре и фирменные цитофотометры. Произошел качественный переход от изучения биохимических процессов в мозге в целом или в его крупных структурах к их исследованиям в отдельных, индивидуальных нервных клеток. И очень быстро стало ясно, что изменения количества РНК и белка в конкретных нейронах могут быть и больше, и быстрее, чем было принято считать раньше.

Первым продемонстрировал функциональную зависимость количественных изменений РНК в нервных клетках Хохберг Хиден. К началу 60-х он формулировал эту зависимость так: - повышенная активность, но в рамках физиологической нормы, приводит к накоплению РНК, а истощающая гиперактивность – к распаду и снижению ее содержания в нейронах. И тут он проявил себя как великий провокатор в науке, связав накопление РНК с формированием памяти, когда зарегистрировал накопление РНК в мотонейронах при обучении крыс смене предпочитаемой лапы. Молекулярные биологи скептически морщились, когда им рассказывали об этой идее, а физиологам она понравилась чрезвычайно. Благодаря Хидену, лет на 15 изучение клеточных и молекулярных механизмов памяти стало самой модной темой в нейрофизиологии.

В результате, была выявлена зависимость процесса формирования долговременной памяти от синтеза РНК и белка. А механизм сопряжения электрических и синтетических процессов в нервных клетках пытались нащупать как раз в количественных цитохимических исследованиях. Работ такого плана было очень много. У нас в этом направлении активно работали лаборатории В.Я. Бродского в Институте биологии развития, Ю.Я. Гейнисмана в Институте ВНД, Н.Н. Демина и Л.З. Певзнера в Институте эволюционной биохимии и физиологии, О.С. Меркуловой и Ю. А. Даринского в Институте физиологии им. И.П. Павлова. Все они по результатам своих исследований опубликовали монографии.

Наступление широким фронтом, изучение динамики содержания РНК в нервных клетках многих структур мозга позвоночных при действии самых разнообразных видов функциональной нагрузки, при решении животными поведенческих задач и фармакологических воздействиях, к прорыву в понимании процессов, тем не менее, не приводило. Изменения количества РНК, чаще всего в пределах ± 10%, видели, в предложенную Хиденом схему полученные результаты не укладывались, как и в какую-либоиную разумную схему тоже. Идея использовать в качестве объекта гигантские нейроны беспозвоночных оказалась очень удачной. Возможность регистрировать электрическую активность конкретных нейронов и в них же определять интенсивность синтеза и/или количество РНК и белка принципиально поменяла ситуацию, позволила искать количественную зависимость между интенсивностью генерации потенциалов действия и синтетическими процессами.
С начала 60-х во многих лабораториях мира начались интенсивные работы по изучению биофизических механизмов генерации токов электровозбудимой мембраны нейронов моллюсков. Очень крупные нейроны "морского зайца" Aplysia, сотни микрон в диаметре, оказались исключительно удобным объектом для микроэлектродных исследований. С этими клетками уже активно работали в США и Европе. Но в наших морях аплизия не водится. И тогда Б.Н. Вепринцев, Д.А. Сахаров и И.В. Крастс отправились на Дальний Восток на поиски " красной трепанги", голожаберного моллюска Tritonia. Эта обитательница Японского моря оказалась одним из мировых чемпионов по величине нервных клеток. У тритонии они доходят до 1 мм в диаметре. С ними легко работать микроэлектродными методами, и их можно четко идентифицировать на гистологических срезах. Именно в экспедициях на остров Путятин были проведены первые исследования влияния электрической стимуляции на морфологию нейронов моллюсков. А затем оказалось, что с гигантскими нейронами можно неплохо работать и дома, в Пущино. У скромных обитателей средней полосы, брюхоногих моллюсков виноградной улитки Helix, прудовика Lymnaea и катушки Planorbarius тоже есть крупные нейроны диаметром до 200-250 микрон. К тому же, на радость экспериментаторам, природа устроила так, что гигантских нейронов в каждом ганглии всегда постоянное количество, и располагаются они в строго определенных местах. Их физиологические, структурные и метаболические характеристики устойчивы и индивидуальны. Функционально такие нейроны являются аналогом ядер в мозге позвоночных. Практически одновременно, в 1967-68 годах была проведена работа по паспортизации гигантских нейронов ганглиев Lymnaea в лаборатории Б.Н. Вепринцева, а в США D. Coggesholl идентифицировал гигантские нейроны абдоминального ганглия Aplysia. C этого времени в нашей лаборатории работа по изучению регуляции обмена РНК и белка в нейронах строилась по схеме: действуем на конкретный, имеющий имя, нейрон – регистрируем его электрический ответ – в этом же нейроне определяем интенсивность мечения РНК – проводим исследование его ультраструктуры


ОСНОВНЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ ВЫПОЛНЕННЫХ В ЛАБОРАТОРИИ ИССЛЕДОВАНИЙ

В группу, занимавшуюся под руководством БН. Вепринцева изучением механизмов взаимосвязи электрической активностью синтеза РНК и белка, входили Т.Л. Дьяконова, Э.Н. Гахова, Л.С. Бочарова. Ультраструктурные исследования проводили совместно с В.Л. Боровягиным и его сотрудницей С.С.Вартонь. Основные результаты были опубликованы в 1965-1976 годах.

Что же нового удалось выяснить за это время? Прежде всего, было установлено, что метаболическая реакция нейронов на электрическое раздражения состоит из двух фаз. Сначала в ответ на стимуляцию происходит частичный распад РНК, так что количество РНК в клетке уменьшается, и одновременно падает синтез новых РНК. Во второй фазе ответа, после прекращения электрической активности, происходит резкая активация синтеза и накопление РНК. Была выявлена быстрая и ярко выраженная трансформация ультраструктуры нервных клеток в ответ на стимуляцию, которая также носит фазный характер. Изменения затрагивают прежде всего структуры, ответственные за синтез РНК и белка: ядро, ядрышки, эндоплазматический ретикулум и рибосомы в цитоплазме. Характер ультраструктурных перестроек свидетельствует о подавлении синтетических процессов в период усиления электрической активности нервных клеток и об их резком нарастании после прекращения активности. Вышедшая в 1972 году в Brain Research статья "Ultrastructural analysis and RNA synthesis in the Lymnaea st. neurons under electrical stimulation" имела широкий резонанс не только в нашей стране. Она цитируется практически во всех обзорах 70-80-х годов, посвященных метаболической реакции нейронов на возбуждение.

Борис Николаевич считал, что потенциалы действия, ПД напрямую регулируют интенсивность синтеза РНК. В конце 1967 года, когда я только начала работать в лаборатории, он написал план работы для старшего лаборанта Бочаровой на ближайшее время. Недавно я его нашла. План предполагал освоение 6 методов, от авторадиографии и электронной микроскопии до микроэлектродной техники. Нужно было для 5 разных идентифицированных нейронов прудовика с разными физиологическими характеристиками

1. определить зависимость интенсивности мечения РНК

- от частоты стимуляции

- от длительности стимуляции

- от числа генерируемых каждым нейроном ПД при стимуляции нервов

- в разное время после стимуляции;

2. провести электронномикроскопическое исследование изменений ультраструктуры стимулированных нейронов во всех перечисленных вариантах раздражения;

3. цитофотометрически количественно оценить сдвиги в содержании РНК в цитоплазме и ядре нейронов при раздражении, опять-таки по всем пунктам.

Получалось, по самым скромным подсчетам, если делать не более 5 повторов на точку, где-то порядка полутора тысяч электрофизиологических опытов и соответственно столько же препаратов для цитологического анализа. Борис Николаевич очень любил писать подробные планы, а еще больше ему нравилось ставить галочки у выполненных пунктов. Этому плану не повезло, галочек удалось поставить немного. И не из-за нерадивости исполнителя. Объект сопротивлялся. Так пункт 3 оказался невыполнимым технически потому, что идентифицированные нейроны очень сильно варьируют по величине. Это зависит от размеров и возраста моллюска. Соответственно, средние величины достоверны только при объеме выборки в десятки клеток. Кроме того, цитоплазма таких огромных клеток, в отличие от нейронов позвоночных, весьма гетерогенна по распределению структур ретикулума и рибосом. Поэтому, чтобы получить достоверную информацию об измененниях количества РНК в гигантских нейронах, необходимо полностью сканировать все срезы каждой клетки. А доступен в то время был только ультрафиолетовый цитофотометр МУФ-5, и никакой компьютерной обработки результатов. А вот с зависимостью синтеза РНК от генерации ПД все оказалось интересней.

Такую зависимость искали не только мы. В начале 70-х еще несколько групп билось над этой проблемой, используя как объект гигантские нейроны моллюсков. Это, прежде всего, Price Pedersen и Daniel Kernell в Каролинском университете в Швеции и Robert Berry и David Wilson в Университете штата Орегон в США. И только R.Berry в статье 1969 года в Science продемонстрировал линейную зависимость увеличения интенсивности синтеза РНК от числа ПД, генерированных нейроном R2 абдоминального ганглия аплизии в ответ на стимуляцию нервов. Остальные наблюдали только тенденцию к активации с очень большим разбросом между клетками. К этому времени мы уже знали, что синтез РНК усиливается не во время стимуляции, а после ее прекращения. Так вот, Berry использовал весьма своеобразный режим стимуляции: от 4 до 9 часов раздражения, но не более 5-10 минут в течение каждого получаса. Перерывы между вспышками вызванной спайковой активности видимо были достаточно длительны для реализации программы активации синтеза РНК.

В процессе стимуляции нейронов постепенно возрастает порог генерации ПД, происходит адаптация к раздражению. Если силу раздражения не увеличивать, то нейрон перестает отвечать. В опытах по стимуляции нейронов прудовика без увеличения силы раздражения мне удалось показать, что прекращение спайковых разрядов – это тот рубеж, когда, несмотря на продолжение стимуляции, реакция подавления синтеза сменяется на активацию. Выходило, что нервная клетка может существовать как бы в двух альтернативных режимах: интенсивная электрическая активность и подавленный синтез РНК или электрическое молчание и повышенный синтез. Этот пример показывает, как важно знать историю функциональной, электрической активности конкретной нервной клетки для разумной интерпретации ее метаболических характеристик в момент фиксации. В противном случае происходит усреднение данных для клеток в разных фазах метаболического ответа, и результат размывается. Управлять электрической активностью, навязывать заданную частоту разряда удается только на короткое время. Поэтому зависимость интенсивности синтеза РНК от частотных и временных параметров стимуляции легко было нарисовать на бумаге и практически невозможно получить в эксперименте. Только в редких случаях удается синхронизовать функциональное и метаболическое состояние нервных клеток в какой-либо структуре. Так, только использование темновой адаптации сетчатки позволило В.Я. Бродскому получить четкую зависимость между активностью ганглиозных клеток сетчатки и содержанием РНК в них.
СВЯЗЬ СИНТЕЗОВ С ЭЛЕКТИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТЬЮ.
МОДЕЛЬ Б. Н. ВЕПРИНЦЕВА И ЕЕ АЛЬТЕРНАТИВА

Пик интереса Бориса Николаевича к разработке этой проблемы приходится на начало 70-х. Его представления о механизме такой связи были простыми и четкими. Основное проявление возбуждения нервной клетки – это активация электрогенной мембраны, усиленная генерация ПД. Основное следствие генерации ПД – это изменение ионного баланса в клетке. Единственный ион, концентрация которого может при этом значимо меняться, - это Са2+. Поэтому именно Са2+ влияет на интенсивность синтеза РНК: повышение концентрации Са2+ , который входит в клетку при генерации ПД, приводит к подавлению синтеза. На нормализацию концентрации Са2+ нейроны отвечают выраженной активизацией синтеза и РНК, и белка. Чем больше РНК, тем интенсивнее синтез белка. Чем больше новых белков, тем выше пластические возможности нервной клетки.

В 1973 году Борис Николаевич организовал в Пущино рабочее совещание «Клеточные механизмы памяти», на котором были подведены некоторые итоги разработки проблемы взаимозависимости электрической и метаболической активности нервных клеток. Итоги оказались не очень оптимистичными. Несмотря на все усилия, нащупать механизм, который связывает формирование памяти с синтезом РНК и белка, не удавалось. Непротиворечиво объяснить, каким образом осуществляется координация процессов, происходящих на наружной мембране, и синтеза РНК в ядре и белка в цитоплазме тоже не получалось. К этому времени сложилось два, на первый взгляд взаимоисключающих подхода. Так, Б.Н. Вепринцев отводил приоритетную роль в регуляции синтезов ПД, а именно потокам Са2+. Он допускал, что некоторые, не все, медиаторы через свои мембранные рецепторы и сопряженные с ними внутриклеточные сигнальные системы могут влиять на синтетические процессы. Но результаты экспериментов, проведенных в собственной лаборатории, поддерживали его убеждение, что только спайковая активность приводит к нарастанию синтеза РНК и белков. Только усиленная генерация ПД на время превращает нейрон в некое подобие секреторной клетки, когда цитоплазму почти целиком заполняет гранулярный эндоплазматический ретикулум. Ни де- или гиперполяризация мембраны током через введенный электрод, ни гиперполязизация адреналином к таким последствиям не проводили, а деполяризация ацетилхолином вообще ничего не меняла в ультраструктуре нейронов и не влияла на синтез РНК.

Сторонники альтернативного подхода наоборот считали, что только синаптические процессы влияют на синтезы, а ПД к этому отношения не имеют. Ее разделяло не только большинство исследователей, работавших с нервными клетками позвоночных. Так, Peterson и Kernell, опираясь на свои результаты, пришли к заключению, что сама по себе генерация ПД, без предшествующих им синаптических потенциалов, к активации синтетических процессов не приводит. Они наблюдали усиление синтеза РНК только в ответ на стимуляцию нейрона аплизии через нервы, а при прямом раздражении через введенный в клетку электрод усиления не было. Позднее Т.Л. Дьяконова тоже провела эксперимент с прямым раздражением нейронов через введенный в клетку электрод. У нее все генерировавшие только ПД нейроны включали в РНК меньше меченого уридина, чем контрольные клетки. Правда, ничего похожего на линейную зависимость включения от количества ПД не наблюдалось. Получалось, что даже при методически одинаковой постановке опытов и использовании сходных объектов полученные результаты можно было трактовать противоположным образом. Концы не связывались, задача не решалась.

Оглядываясь назад, отчетливо видно, что идея построения простой схемы регуляторных влияний электрической активности на синтетические процессы в нервных клетках изначально не имела достаточных шансов на успех. Метаболическая реакция на раздражение многокомпонентна и многофазна. Она включает в себя не только усиление, но и подавление синтеза РНК, а также изменение паттерна экспрессируемых РНК. При этом подавление синтеза не всегда переходит в его активизацию до уровня выше исходных значений. Сдвиги в содержании РНК определяются как интенсивностью ее синтеза, так и скоростью распада. Цитоплазматическая РНК, а больше чем на 90% это РНК рибосом, пополняется за счет экспорта из ядра, но усиление синтеза РНК в ядре для этого совсем не обязательно. В ядре существует «аварийный» запас готовых рибосом, которые могут экстренно выбрасываться в цитоплазму. Другими словами, существует определенная независимость процессов накопления и распада, синтеза и транспорта РНК. Следовательно, и регуляция их не может осуществляться каким-либо одним фактором, будь то вход Са2+ или активизации синаптических рецепторов.

То, что убедительно доказать правоту предлагаемой им схемы регуляции обмена РНК в нервных клетках не получалось, делало саму проблему неинтересной для Бориса Николаевича. А тут еще зарубежные коллеги подложили большую свинью. Сначала группой Peterson была опубликована работа, из которой следовало, что интенсивность включения меченого уридина в РНК при стимуляции нейронов критически зависит от концентрации предшественника в инкубационной среде. В их опытах стимуляция приводила к увеличению мечения РНК только тогда, когда уридина в среде было много, сотни микромолей. Затем вышла статья Wilson и Berry, где они честно написали, что тоже видели увеличение включения метки в РНК, только если кроме меченого уридина добавляли в среду еще и немеченый. Когда такой добавки не делали, стимуляция влияния на включение не оказывала. Мы работали только с низкими концентрациями уридина и наблюдали как активацию, так и подавление включения. Влияние транспорта уридина в клетки на включение метки в наших опытах удалось исключить, но серьезная неопределенность относительно использования добавленного и/или эндогенного уридина для синтеза оставалась. Во весь рост встал вопрос, насколько адекватно включение меченых предшественников отражает интенсивность синтеза РНК в нейронах моллюсков и клеточных системах вообще.

Мало того, Wilson и Berry проанализировали влияние синаптической стимуляции нейронов аплизии на синтез белков. Результат оказался неутешительным. По их данным, после стимуляции ни общее включение, ни распределение метки по фракциям белков разного молекулярного веса достоверно не менялось. В обзоре 1973 года, опубликованном в Progress in Neurobiology, Peterson подвел итог исследованиям влияния электрической активности на синтез РНК в гигантских нейронах моллюсков. По его мнению, поскольку изменений синтеза белков в теле этих нейронов после синаптической стимуляции найти не удалось, то и регистрируемые при определенных условиях сдвиги интенсивности мечения РНК физиологического значения не имеют и, скорее всего, являются артефактом.

Приговор был суров, он отражал сложившийся к тому времени идейный и методический кризис в разработке проблемы. Конечно, работа с идентифицируемыми клетками, с известной историей их функциональной активности существенно повысила уровень определенности, которого удалось добиться в определении параметров их метаболической реакции. Но для понимания механизмов сопряжения электрических процессов на наружной клеточной мембране и синтезов в ядре и цитоплазме этого оказалось недостаточно. Подход исчерпал себя. Не случайно, Борис Николаевич не написал на эту тему не только монографии, но даже обзора. Новый подъем интереса к проблеме приходится на 90-е годы, но базировался он на иной идеологии и других методических возможностях. Я бы сказала, что от цитологов и физиологов разработка проблемы перешла в руки молекулярных биологов.


СОВРЕМЕННЫЙ ЭТАП ИССЛЕДОВАНИЙ РОЛИ КАЛЬЦИЯ
В РЕГУЛЯЦИИ СИНТЕЗА РНК И БЕЛКА В НЕРВНЫХ КЛЕТКАХ

За прошедшие 30 лет представления о роли Са2+ в жизнедеятельности клетки изменились принципиально. Когда Б.Н. Вепринцев развивал свою идею участия Са+2 в регуляции синтеза РНК, считалось, что Са2+ – это только один из токопереносящих ионов, для которого существуют каналы в наружной мембране, мембране саркоплазматического ретикулума и митохондрий. К началу 80-х на функции Са+2 смотрели уже шире. Академик П.Г. Костюк в одном из своих обзоров, посвященных изучению кальциевых токов, писал, что электрическое возбуждение тел нервных клеток, с точки зрения передачи информации от нейрона к нейрону, не имеет смысла. Спайк возникает в начальном сегменте аксона и распространяется по нему до синаптических контактов с другими нервными клетками. Распространение же ПД в обратном направлении, от аксонного холмика в сому нервных клеток – это своего рода информационный тупик. Он допускал, что смысл генерации ПД в соме может состоять именно в запуске метаболического ответа. Теперь же не вызывает сомнения, что Са2+ – это, прежде всего, один из основных регуляторов и интеграторов множества внутриклеточных процессов, и главная его функция сигнальная. Выявлены и хорошо изучены системы Са-зависимых протеинкиназ, известны их субстраты и механизмы регуляции активности. За прошедшие годы сформирована общая идеология каскадной передачи сигналов от клеточной мембраны в ядро при помощи вторичных и третичных посредников. Определена роль активации ранних генов как промежуточного звена для регуляции экспрессии структурных генов в ответ на сигналы с наружной мембраны. Установлена структура регуляторных локусов генов, известны способы влияния на их активность.

Когда-то мы имели дело с неким подобием черного ящика: на входе - стимуляция нейрона, на выходе – изменения ультраструктуры, количества и синтеза РНК. Что происходит между стимулом и метаболическим ответом, было совершенно непонятно. Высказывавшиеся тогда предположения о возможности действия Са+2 и/или медиаторов непосредственно на ДНК в ядре, с позиций сегодняшнего дня, не выдерживают критики. Для анализа состояния клеток мы использовали цитофотометрию, авторадиографию, электронную микроскопию. Соответственно, имели дело с набором интегральных показателей: общее количество РНК или белка, суммарное включение. За прошедшие годы, благодаря появлению новых методов (PCR, гибридизация in situ, иммуноблотинг и многие другие) изменился сам предмет исследования. Теперь есть возможность измерять в конкретных клетках уровень экспрессии конкретных генов, оценивать не просто содержание индивидуальных белков, но и их разнообразных посттрансляционных модификаций, например фосфорилированных и дефосфорилированных форм. Можно определить не только локализацию того или иного белка, но и отследить его перемещения в клетке. В целом, организация большинства внутриклеточных процессов уже хорошо изучена, основные участвующие в них белки определены, и доминирующая тенденция состоит в разборке механизма на все более и более мелкие детали. И, в соответствии с этой тенденцией, основной акцент в изучении участия Са2+ в регуляции синтезов сместился в область модуляции экспрессии конкретных генов. Что же удалось выяснить на этом этапе разработки проблемы? Во-первых, доказано, что Са2+, через запускаемые им сигнальные каскады, действительно может на уровне регуляции транскрипции ранних и структурных генов влиять на то, какие белки преимущественно синтезируются клеткой. Продемонстрирована Са-зависимая избирательная +/- регуляция экспрессии большого набора структурных генов. Такая регуляция осуществляется при участии кальмодулин-зависимых протеинкиназ, протеинкиназы С, инозитол-зависимых, МАРК и других киназ через чувствительные к сАМР (CREB) и сыворотке (SR) элементы промотеров ранних генов. Чрезвычайно важно, что регуляция действительно избирательная: одновременно экспрессия одних генов усиливается, других падает, остальных не меняется, а интегральная интенсивность синтеза мРНК при этом не меняется.

Во-вторых, главный камень преткновения в дискуссиях 70-х годов, вопрос о том спайковая или синаптическая активность определяет характер метаболи-ческой реакции нейронов, оказался вообще иллюзорным. Выяснилось, что активация самых распространенных в ЦНС позвоночных возбуждающих глютаматных синапсов приводит к значительным изменениям внутриклеточной концентрации Са2+, потому что основным токопереносящим ионом рецепторов глютамата является именно Са2+. А вот нервные клетки с чисто кальциевым механизмом генерации ПД встречаются нечасто. Даже среди нейронов моллюсков смешанный тип генерации ПД, одновременное присутствие и Са2+, и Na+ входящих токов, распространен больше. Что касается позвоночных, то ионный механизм генерации ПД у них меняется по мере созревания мозга. Когда у юных нейронов появляется спайковая активность, то ПД определяют Са2+ токи, позднее сочетание Са2+ и Na+ токов, а у абсолютного большинства зрелых нейронов только Na+ токи. Это, к стати, было хорошо известно и во времена дискуссий

70-х. Поэтому в одних случаях определяющим будет вход Са2+ через потенциало-зависимые каналы, в других поступление Са2+ через рецепторные каналы, а в-третьих через те и другие одновременно. Не менее вероятен и такой вариант, когда индуктором метаболического ответа будет совсем не вход Са2+ , а его внутриклеточное перераспределение, освобождение из ретикулума. Противопоставление спайковой и синаптической активности как регуляторов синтеза РНК и/или белка в нервных клетках утратило всякий смысл. Очевидно, что запуск метаболического ответа может происходить и при активации иных сигнальных систем. Нервные клетки слишком отличаются друг от друга по своим свойствам, чтобы закономерности, найденные для какого-либо одного конкретного типа нейронов, можно было бы сразу же обобщать до уровня общих правил. Именно поэтому так сложно увидеть общее за разнообразием частностей. Но, увы, грех влюбленности в свои, и только в свои результаты так распространен.

Борис Николаевич в своих построениях отталкивался от оценки возможных изменений концентрации Са2+, считая, что при генерации ПД идет его линейное накопление. Отсюда и его стремление найти пропорциональность ответной реакции частоте или числу ПД. За прошедшее с тех пор время стала очевидной вся сложность регуляции кальциевого гомеостаза в клетке. Измерены потоки Са2+, определены типы кальциевых каналов и их характеристики. Установлены параметры депонирования и освобождения Са2+ ретикулумом и митохондриями, связывания Са2+ цитоплазматическими белками. Изучены механизмы выведения Са2+из клеток. Теперь мы знаем, что распределение Са2+ в клетке может быть и неоднородным: концентрации Са2+в ядре и цитоплазме далеко не всегда совпадают, возможно его накопление в примембранной области. Поэтому ни о какой линейности накопления Са2+говорить не приходится, все оказалось много сложнее.

И вот самое удивительное, на мой взгляд, из того, что стало известно за последнее время о регуляции кальцием экспрессии РНК. Оказывается, что имеет значение не просто сколько Са2+ поступает в клетку, но и через какие «ворота», через потенциалозависимые каналы электрогенной мембраны или в результате активации хеморецептивной мембраны через каналы рецепторов глютамата. Вот только один пример. Вход Са2+ в нервную клетку при генерации ПД более эффективно стимулирует CRE-регулируемую экспрессию c-fos гена чем поступление Са2+ через синаптические NMDA глютаматные рецепторы. А для стимуляции того же гена c-fos через SRE элемент промотера значения не имеет, через какие каналы входит Са2+. Более того, показано, что на экспрессию конкретных генов влияет не просто средняя частота и длительность, а временной паттерн активности, то, как ПД и синаптические потенциалы группируются, какие между ними интервалы.Так, генерация пачек ПД нейронами дорзальных ганглиев в ответ на раздражение с частотой 10гц в течение 10 секунд и интервалом между стимулами 1мин активирует экспрессию c-fos гена в максимальной степени, причем быстро, уже в первые минуты стимуляции. Когда же интервалы между пачками ПД увеличивают, ответ уменьшается. При интервале в 5 мин даже 30-минутное раздражение уже не влияет на синтез мРНК для c-FOS белка (D. Fields et al.,1997). Согласно современным представлениям, через Са-зависимые сигнальные системы может осуществляться тонкая настройка программы синтеза белков на уровне транскрипции отдельных генов. При этом решающее значение имеют совсем не суммарные потоки, а динамика содержания и распределения Са2+ в клетке: где, как быстро, на какое время, с каким градиентом меняется его концентрация. Важно только помнить, что механизм кальциевой регуляции экспрессии генов отнюдь не является исключительной особенностью нервных клеток, механизм универсален и реализуется большинством клеток. К тому же это далеко не единственный способ сопряжения мембранных и внутриклеточных процессов.

Влияние Са2+ на внутриклеточные процессы, конечно же, не ограничивается модуляцией синтеза мРНК и, соответственно, конкретных белков. Общая интенсивность белкового синтеза тоже зависит от Са2+. В серии отличных работ D.BrÖstrÖm и его сотрудники показали, что существует довольно узкий диапазон концентраций Са2+ в цитоплазме и эндоплазматическом ретикулуме, при которых в нервных клетках идет активный синтез белка. Поднимается концентрация Са2+ выше этого оптимума - синтез белка подавлен, падает ниже - трансляция практически останавливается. Наконец, существует еще одна точка приложения регулирующего действия Са2+ на белковый синтез. Это влияние потоков Са2+ на так называемый локальный синтез белка. Особенность локального синтеза состоит в преимущественном накоплении определенных мРНК в некоторых областях клетки, в результате чего нужные белки синтезируются непосредственно в месте их использования. В случае нервных клеток больше всего обсуждают возможную значимость локального синтеза белка в постсинаптических участках дендритов, там, где происходит накопление Са2+ в результате активации рецепторов медиаторов. Делается много спекуляций по поводу того, каким образом локальный синтез белка под влиянием Са2+ токов мог бы приводить к проявлениям структурной пластичности нейронов в форме изменений структуры синапсов, длины и ветвления дендритов.
Made on
Tilda